MegaAAV™ 递送系统

VectorBuilder创新且高效的MegaAAV™多载体系统突破了传统AAV系统的核心限制,不仅可表达超出单个AAV载体容量的大型转基因,还能用于需要多个元件的复杂系统。依托我们的专有技术,研发人员能够量身定制最理想的治疗方案,而无需因容量限制而妥协。

AAV在基因治疗中的包装容量限制

传统AAV载体通常受包装容量限制,仅能递送小型的有效载荷,这对基因治疗方案的开发造成了极大阻碍。尽管现有双AAV系统可通过将超大基因拆分到多个载体中克服容量限制,但受限于递送效率低、无法完整重组出有功能的转基因,该系统的临床应用潜力仍存在较多局限。

图1 使用MegaAAV™体外高效转导细胞并进行有功能的转基因的组装。将MegaAAV™和Hybrid AK双AAV(均编码EGFP基因)以不同MOI分别转导HEK293T细胞。转导后72小时测量EGFP表达水平,并拍摄具有代表性的荧光显微图像(MOI = 10⁵)。

突破AAV载体的有效载荷限制

IP outlicensing Proprietary Delivery Systems

利用创新的体内重组策略,我们的专有多AAV递送系统显著提高了其递送基因的转录水平。该系统设计上相当通用,在超越双载体递送形式的同时还可递送更大的基因片段或实现复杂的多元件系统表达。

图2 MegaAAV™在体内可实现更高的基因转录水平。分别向C57BL/6J小鼠视网膜下注射等摩尔量的MegaAAV™和Hybrid AK双AAV(均编码EGFP基因)。(A)注射一个月后拍摄小鼠视网膜样本的代表性荧光显微镜图像(放大倍数:200×;曝光时间:50 ms);(B)提取样本mRNA进行qPCR分析。

通过MegaAAV™基因递送实现DMD功能重建
图3 使用MegaAAV™多载体系统在体外成功实现DMD的功能重建。将人DMD 基因(约11 kb)分割为三个部分(DMD-I、DMD-II、DMD-III),并分别包装到独立的AAV载体中。将包含全部三条片段的MegaAAV™和包含单个片段的AAV病毒分别转导HEK293T细胞(MOI=10^5),转导后48小时收获细胞裂解物。未转导细胞(NC)和转染含有全长DMD质粒的细胞(PC)作为对照。所有样本均使用针对DMD-II和DMD-III中的特异性区域的抗体进行Western blot分析。粉色箭头表示全长DMD基因的体外重建,青色箭头表示DMD片段。

大片段基因治疗方案的新突破:案例研究

许多与视网膜疾病相关的治疗性基因超过了AAV包装限制,这对基于AAV的治疗药物研发构成了显著挑战。通过MegaAAV™系统,研究人员能够高效递送更大的目的转基因(GOI),并在靶细胞中实现其功能重建(全长GOI;FL-GOI),从而为全新的基因治疗方案解锁更广泛的可能性。

Innovating Large Gene Therapy Solutions: A Case Study
MegaAAV™恢复视觉功能
图4 通过MegaAAV™基因递送实现有效的表型恢复。一个人类视网膜基因(约6 kb)被分为两部分:5’ 端的GOI区域包含一个N端FLAG标签,3’ 端的GOI区域包含一个C端HA标签,随后分别将其包装进基于AAV8的病毒载体中。(A)分别用含有两个片段的MegaAAV™或只包含任一片段的普通AAV载体(MOI = 105)转导HEK293T细胞,转导后72小时收集细胞裂解液。将未转导细胞(NC)以及转染了编码全长基因并带有C端HA标签质粒的细胞(PC)作为对照。粉色箭头表示视网膜基因在体外完全被重建,而青色箭头表示基因片段。(B-C)对两周龄的转基因敲除小鼠注射编码相同5’和3’区域的基因、但不含表位标签的MegaAAV™。注射后3周,如电视网膜图(B)中的b波(星号)以及视锥细胞表达分析(C)所示,经治疗的小鼠视觉功能和视网膜形态均得到很大程度的恢复。野生型(WT)和未处理的敲除(KO)小鼠亦作为对照纳入实验。
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